Bsh1236I (BstUI)是经过基因工程重组的快速限制性内切酶,适用于质粒 DNA、PCR 产物或基因组 DNA 等的快速酶切。所有快速内切酶在通用的 CutFlex 或 CutFlex Color Buffer 中都具有优良的活性,能够在 5~15 分钟内完成酶切。此外,瀚海去磷酸化、连接试剂在 CutFlex Buffer 中均具有 100%活性,支持一管化反应,提升“酶切-修饰-连接”的体验。 CutFlex Color Buffer 包括红色和黄色示踪染料,可将产物直接用于凝胶电泳。CutFlex Color Buffer 的红色染料与 2500 bp 双链 DNA 片段在 1%琼脂糖凝胶中迁移速率接近; 黄色染料与 10 bp 双链 DNA 片段在 1%琼脂糖凝胶中迁移速率接近。

同裂酶:BstUI, BspFNI, BstFNI,AccII
注:同裂酶对于不同的甲基化修饰可能具有不同敏感性。
图标注释
快速内切酶,可在 5~15 min 内完成反应最适反应
温度为 37℃
对于被 CpG 甲基化的 DNA,剪切可能受阻
可用于表观遗传学分析
失活条件为 80℃温育 20 min
3 h 温育未表现星号活性,更长时间酶切可能出现星号活性
产品信息
| 产品名称 | 货号 | 包装规格 |
|---|---|---|
| Bsh1236I(BstUI) | HSM052051 | 50rxns |
产品组分
| 组分 | 规格 |
|---|---|
| Bsh1236I(1 rxn/μL) | 50 μL |
| 10×CutFlex Buffer | 1 mL |
| 10×CutFlex ColorBuffer | 1 mL |
运输及保存方法
-25~-15℃运输与保存。
建议反应条件
1. 1×CutFlex Buffer; 2. 37℃温育; 3. 参照“DNA 快速酶切流程”配制反应体系。
失活条件
80℃温育 20 min。
质量控制
功能活性检测:37℃下,在 20 μL 通用 CutFlex 反应体系中, 1 μL Bsh1236I 能够在 15 min 内完全消化 1 μg λDNA。
超长时间温育检测:37℃下,在 20 μL 通用 CutFlex 反应体系中, 将 1 μL Bsh1236I 与 1 μg λDNA 共同温育 3 h, 未检测到其他核酸酶污染或星号活性引起的底物非特异性降解。更长时间酶切可能出现星号活性。
酶切-连接-再酶切检测:37℃下,使用10倍酶量的Bsh1236I消化DNA 底物,回收酶切产物,在 22℃下使用 T4 DNA Ligase (Fast)可以将~50%的酶切产物重新连接。将连接产物再次回收后,使用相同的内切酶可以重新切开约 95%以上的连接产物。
使用方法
1. DNA 快速酶切流程
1) 在冰上按如下建议的加样顺序配制反应体系:
| 组分 | 质粒 DNA | PCR 产物 | 基因组 DNA |
|---|---|---|---|
| ddH2O | 15 μL | 16 μL | 30 μL |
| 10× CutFlex Buffer 或 10× CutFlex Color Buffera | 2 μL | 3 μL | 5 μL |
| 底物 DNA | 2 μL (up to 1 μg) | 10 μL (~0.2 μg) | 10 μL (5 μg) |
| Bsh1236I (BstUI) | 1 μL | 1 μL | 5 μL |
| Total | 20 μL | 30 μL | 50 μL |
a.本体系适用于经过纯化的 PCR 产物酶切。未纯化 的 PCR 产物具备一定的离子强度,10×CutFlex Buffer 加入量可适当减少至 2 μL。但由于 DNA 聚合酶同时具有外切酶活性,会影响酶切产物,因此如下一步需进行克隆等操作,建议酶切前对 PCR 产物进行纯化。
2) 轻柔吸打或轻弹管壁以混匀(切勿涡旋), 然后瞬时离心以收集挂壁液滴;
3) 37℃温育 15 min(质粒),或 15~ 30 min (PCR 产物),或 30~60 min(基因组 DNA); 4) 80℃温育 20 min 即可使酶失活,停止反应 (可选); 5) 如果使用 CutFlex Color Buffer 进行酶切反应,得到的产物可以直接进行上样电泳。
2. 双酶切或多酶切
| 组分 | 加入量 | ||||
|---|---|---|---|---|---|
| DNA | 1 μg | 2 μg | 3 μg | 4 μg | 5 μg |
| Bsh1236I (BstUI) | 1 μL | 2 μL | 3 μL | 4 μL | 5 μL |
| 10× CutFlex Buffera | 2 μL | 2 μL | 3 μL | 4 μL | 5 μL |
| Total | 20 μL | 20 μL | 30 μL | 40 μL | 50 μL |
1) 每种快速内切酶的用量为 1 μL,并根据需要适当扩大反应体系;
2) 所有快速内切酶的体积总和不得超过总反应体系的 1/10;
3) 如果所用的几种快速内切酶的最适反应温度不同,应先以最适温度低的酶开始酶切, 再添加最适温度较高的酶,在其最适反应温度下进行酶切反应。
注意事项
Bsh1236I (BstUI) 和 BstUI 是同裂酶,在 60℃时活性百分百,但在 60℃时必须使用 CutFlex Buffer,以保证反应正常进行。
不同 DNA 中的酶切位点数量
| DNA | 酶切位点数量 |
|---|---|
| λDNA | 157 |
| ΦX174 | 14 |
| pBR322 | 23 |
| pUC57 | 11 |
| pUC18/19 | 10 |
| SV40 | 0 |
| M13mp18/19 | 18 |
| Adeno2 | 303 |
甲基化修饰影响
| Dam | Dcm | CpG | EcoKI | EcoBI |
|---|---|---|---|---|
| 无影响 | 无影响 | 剪切受阻 | 无影响 | 无影响 |
在不同反应缓冲液中的活性
| CutFlex Buffer | Thermo Scientific FastDigest Buffer | NEB rCutSmart™ Buffer | Takara QuickCut™ Buffer |
|---|---|---|---|
| 100% | 100% | 100% | 100% |
注:活性数据来自瀚海限制酶标准反应体系下的检测。
DNA 修饰酶在 Buffer 中的活性
| DNA 修饰酶 | Buffer | 活性 |
|---|---|---|
| T4 DNA 连接酶(HSM060201) | 10× CutFlex Buffer | 100% |
| 10× CutFlex Color Buffer | 100% |
注:活性数据来自瀚海新酶标准反应体系下的检测;T4 DNA Ligase 需要 ATP 作为辅助因子。
