SwaI 属于 Type IIP 型限制酶，来源于沃氏葡萄球菌(Staphylococcus warneri) (B. Frey)，经大肠杆菌重组表达后获得。SwaI 识别并切割 8 碱基回文序列 ATTTAAAT，形成平末端，常用于分子克隆、基因分型等研究。
同裂酶：SmiI
注：同裂酶对于不同的甲基化修饰可能具有不同敏感性。
图标注释
最适反应温度为 37℃
失活条件为 80℃温育 20 min
3 h 温育未表现星号活性，延时酶切可能出现星号活性
产品信息
| 产品名称 | 货号 | 包装规格 |
|---|---|---|
| SwaI | HSM052021 | 1000 U |
产品组分
| 组分 | 规格 |
|---|---|
| SwaI(10 U/μL) | 100 μL |
| 10×Cut Buffer C | 1 mL |
活性定义
1 活性单位(U)是指在 50 μL 反应体系中，37℃ 1 h 内完全酶切 1 μg V 质粒所需的酶量。
运输及保存方法
-25~-15℃运输与保存，有效期 2 年。
建议反应条件
1. 1×Cut Buffer C；
2. 37℃温育；
3. 参照“DNA 酶切流程”配制反应体系。
失活条件
80℃温育 20 min。
质量控制
功能活性检测：37℃下，10 U SwaI 能够在 15 min 内完全消化 1 μg V 质粒。
超长时间温育检测：37℃下，将 10 U SwaI 与 1 μg V 质粒共同温育 3 h，未检测到其他核酸酶污染或星号活性引起的底物非特异性降解。延时酶切可能出现星号活性。
酶切-连接-再酶切检测：37℃下，使用 10 U SwaI 消化底物，回收酶切产物。在 22℃下使用适量 T4 DNA Ligase (Fast)可以将酶切产物重新连接。将连接产物再次回收后，使用相同的内切酶可以重新切开连接产物。
使用方法
1. DNA 酶切流程
1) 在冰上按如下建议的加样顺序配制反应体系：
| 组分 | 用量 |
|---|---|
| ddH2O | Up to 50 μL |
| 10×Cut Buffer Ca | 5 μL |
| 底物 DNA | 1 μg |
| SwaI(10 U/μL) | 1 μL |
| Total | 50 μL |
a. DNA 底物中应不含苯酚、氯仿、乙醇、EDTA、洗涤剂或高浓度盐，否则将会影响 SwaI 酶活性；
2) 轻柔吸打或轻弹管壁以混匀（切勿涡旋），然后瞬时离心以收集挂壁液滴；
3) 37℃温育 15 min~3 h；
4) 80℃温育 20 min 即可使酶失活，停止反应，或者通过吸附柱或苯酚/氯仿纯化终止反应。
2. 注意事项
1) 反应体系中加入的酶体积不应超过总体积的 10%，避免酶中过多的甘油引起星号活性；
2) 限制性内切酶存储缓冲液中的添加剂 （例如甘油、盐）与底物溶液中的污染物（例如盐、EDTA 或乙醇等）相同，反应体积越小，酶切反应抑制效应越强。
不同 DNA 中的酶切位点数量
| DNA | 酶切位点数量 |
|---|---|
| λDNA | 0 |
| ΦX174 | 0 |
| pBR322 | 0 |
| pUC57 | 0 |
| pUC18/19 | 0 |
| SV40 | 1 |
| M13mp18/19 | 1 |
| Adeno2 | 1 |
甲基化修饰影响
| Dam | Dcm | CpG | EcoKI | EcoBI |
|---|---|---|---|---|
| 无影响 | 无影响 | 无影响 | 无影响 | 无影响 |
在不同反应缓冲液中的活性
| CutFlex Buffer | Thermo Scientific FastDigest Buffer | NEB rCutSmart™ Buffer | Takara QuickCut™ Buffer |
|---|---|---|---|
| <12.5% | <12.5% | <12.5% | <12.5% |
注：活性数据来自瀚海限制酶标准反应体系下的检测。
